以下是自来水厂浮游生物显微镜观察的一般方法：

样本采集

采样器具准备：准备好合适的采水器，如有机玻璃采水器，用于采集不同深度的水样。同时准备好样品瓶，一般使用 500 毫升或 1000 毫升的具塞玻璃瓶，确保其清洁无菌。

采样位置与深度：在自来水厂的原水取水口、沉淀池、过滤池等不同位置进行采样，根据水体深度，在表层、中层和底层分别采集水样，以获取更全面的浮游生物样本。

采样量：每个采样点一般采集 500 毫升至 1000 毫升水样，确保有足够的样本用于观察。

样本预处理

浓缩样本：如果水样中浮游生物密度较低，可采用过滤或离心的方法对水样进行浓缩。例如，使用孔径为 0.45 微米或更小的滤膜过滤一定体积的水样，将浮游生物截留在滤膜上，然后将滤膜上的生物洗脱到少量的水中，制成浓缩样本。或者将水样在离心机中以 3000 转 / 分钟至 5000 转 / 分钟的速度离心 10 分钟至 15 分钟，使浮游生物沉淀，然后倒掉上清液，留下适量的浓缩液。

固定样本：为了保持浮游生物的形态结构，便于观察，需要对样本进行固定。常用的固定剂有鲁哥氏液，一般每 100 毫升水样加入 1 毫升至 2 毫升鲁哥氏液。也可以使用福尔马林固定，浓度一般为 4% 至 5%。固定后的样本可在低温、避光条件下保存，尽快进行观察。

显微镜观察

显微镜准备：选择合适的显微镜，如光学显微镜，配备明场、相差等观察模式。调整显微镜的光源亮度、焦距等参数，使视野清晰。

制片：取一滴经过预处理的样本液滴在载玻片上，盖上盖玻片，注意避免产生气泡。如果样本浓度较高，可适当稀释后再制片。

低倍镜观察：首先在低倍镜下（如 10× 物镜）对样本进行全面观察，扫视整个视野，了解浮游生物的种类和大致数量，确定优势种类。观察浮游生物的分布情况，是否有聚集现象等。

高倍镜观察：对于低倍镜下观察到的感兴趣的浮游生物，转换到高倍镜（如 40× 或 100× 物镜）下进行更详细的观察。观察浮游生物的细胞结构、形态特征、运动方式等。在 100× 物镜下，可能需要使用油镜来提高分辨率，观察更细微的结构。

记录与绘图：使用显微镜自带的成像系统或数码相机，对观察到的浮游生物进行拍照记录。同时，可根据观察结果，绘制浮游生物的形态图，标注出关键结构和特征。

结果分析

种类鉴定：根据浮游生物的形态特征、细胞结构等，查阅相关的分类图鉴和文献，对观察到的浮游生物进行种类鉴定。确定其所属的门、纲、目、科、属、种。

数量统计：采用计数框等工具，对一定体积样本中的浮游生物进行数量统计。例如，使用血球计数板或浮游生物计数框，在显微镜下计数每个小格或每个视野中的浮游生物数量，然后换算成每升或每毫升水样中的浮游生物数量。

群落结构分析：根据种类鉴定和数量统计结果，分析浮游生物的群落结构，包括优势种、多样性指数、均匀度等。了解不同种类浮游生物之间的相对比例和相互关系，评估自来水厂水体的生态状况和水质情况。